量的问题，楼上的已经回答了。
讲一下抗体的用法：
一般1毫升样本加10微升抗体，室温避光孵育半小时，PBS洗涤3次，最后重新悬浮于500微升PBS。还有就是，在加入你要的抗体前，要加入无荧光的非特异性抗体，先孵育15分钟，以封闭细胞表面的Ig受体，这个不需要洗涤。
你除了购买CD34， CD4， CD8三种不同荧光标记的抗体外，还需要另外购买和这三种抗体荧光颜色相同的同型非特异性抗体，比如你的CD抗体都是IgG1，那你就要3种颜色的非特异性IgG1。
上机的时候，除了样本以外，需要如下额外的7个管子来调机器：
1. 不加任何抗体的，用来调节FCS和SCC
2. 3个管子，分别加了同型非特异抗体，经过了孵育和洗涤。分别用来设置3种荧光通道的阴性Gate
3. 3个管子，分别单独加了特异性CD3， CD4 和CD8 荧光抗体的，分别用来设置3种荧光的阳性Gate，并设置机器的compensation
4. 最后才是你加了3个抗体，经过孵育和洗涤的样本
一般细胞数量为每份10E6，最少也最好不要低于5*10E5。做流式，最好用直标，购买的时候一定要看好别弄错了
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